Methoden

Datenquelle

ANRESIS sammelt und analysiert anonyme Daten zur Antibiotikaresistenz, die wöchentlich oder monatlich von einem repräsentativen Netzwerk Schweizer klinischer Mikrobiologielabors übermittelt werden. Die Daten entstehen im Rahmen der medizinischen Routineversorgung (Datenschutzerklärung) und werden so weitergegeben, wie sie von den Laboren geliefert werden. ANRESIS führt keine Datenvalidierung durch. Alle Laboratorien, die Daten für diesen Bericht bereitstellen, sind von Swissmedic zugelassen und nehmen an mindestens einem externen Qualitätskontrollprogramm teil. Die meisten Laboratorien verwenden halbautomatisierte Systeme, die auf den EUCAST-Richtlinien basieren. Quantitative Resistenzdaten, wie minimale Hemmkonzentrationen (MHK) oder Scheibendiffusionsdurchmesser (DD), werden nur von einem Teil der Labore übermittelt. Daher basieren alle Analysen auf den interpretierten quantitativen Resistenztestergebnissen (empfindlich, empfindlich bei erhöhter Exposition, resistent; S-I-R). 

Der Datensatz deckt etwa 90 % der jährlichen Krankenhausaufenthaltstage in der Schweiz (Einzelheiten siehe interaktive Grafik) und mindestens 50 % der ambulant tätigen Ärzte ab. Die verfügbaren epidemiologischen Variablen ermöglichen eine Stratifizierung nach Versorgungssetting (Krankenhaus vs. ambulant), Altersgruppe und anatomischer Lokalisation. Beim Hochladen der Daten werden automatisierte Algorithmen eingesetzt, um Duplikate zu identifizieren und weitere Qualitätsprüfungen durchzuführen.

Hinweise zur Interpretation: Da die Analysen auf interpretierten qualitativen Resistenzdaten („S-I-R“) basieren, können sich Änderungen der Grenzwerte im Laufe der Zeit auf die beobachteten Resistenztrends auswirken. Zudem können laut EUCAST für verschiedene Infektionsarten unterschiedliche Grenzwerte verwendet werden. Die Anzahl und Art der teilnehmenden Labore ändern sich im Laufe der Zeit, was die Ergebnisse beeinflussen kann. Die jährlich an ANRESIS übermittelten Isolatenzahlen sind in einem gestapelten Balkendiagramm dargestellt.

Datenanalyse

Einzelheiten zu den einzelnen Analysen finden sich unter „Zusätzliche Informationen“ in den entsprechenden Abbildungen. Ergebnisse von Referenzlaboren sowie Screening-Ergebnisse werden von den Laboren gekennzeichnet und aus den meisten Analysen ausgeschlossen, ebenso wie doppelte Ergebnisse (derselbe Patient, derselbe Mikroorganismus, dasselbe Kalenderjahr). Da Patientenkennungen laborabhängig sind, konnten doppelte Isolate aus verschiedenen Laboren nicht identifiziert und entfernt werden. Die meisten Analysen beschränkten sich auf Isolate aus Blutkulturen oder Liquor, um den Vergleich mit internationalen Überwachungsdaten zu erleichtern.

Die Resistenzanteile wurden als Anzahl der resistenten Isolate geteilt durch die Gesamtzahl der getesteten Isolate berechnet. Ein Isolat wurde als resistent gegen eine Antibiotikagruppe eingestuft, wenn eine Resistenz gegen mindestens ein Antibiotikum dieser Gruppe nachgewiesen wurde. Zur Berechnung des 95-%-Konfidenzintervalls der Resistenzanteile wurde die Wilson-Score-Methode verwendet.

Für die Berechnung der Inzidenzraten wurden nur invasive Isolate aus Spitälern berücksichtigt, die mindestens eine Probe pro Bett und Jahr einreichten. Die Isolatenzahlen wurden auf die Schweizer Bevölkerung hochgerechnet, basierend auf dem Anteil der nationalen Spitalbetttage, der von den teilnehmenden Spitälern abgedeckt wurde. Die Hochrechnung erfolgte stratifiziert nach Sprachregion sowie nach dem Status als Universitäts- bzw. Nicht-Universitätsspital. Die Inzidenzraten werden als Fälle pro 100'000 Einwohner angegeben. Es wurde ein exaktes Poisson-Konfidenzintervall verwendet, das auf der Gamma-Parametrisierung des exakten (Garwood-)Poisson-Intervalls basiert und die Chi-Quadrat-Formulierung auf fraktionierte Ereigniszahlen verallgemeinert.

Das Programm zur Überwachung von Resistenzen bei Nutztieren und Fleisch wird jährlich für bestimmte Krankheitserreger bei Schweinen, Rindern, Geflügel und Puten festgelegt. Seit 2016 werden geschichtete Zufallsstichproben entnommen. Die Probenahme verteilt sich gleichmäßig über das gesamte Jahr und basiert auf einem für Fleischkontrollen festgelegten Probenahmeplan. Die Proben werden in den beiden größten Geflügelschlachthöfen sowie in den vier größten Schweineschlachthöfen und den fünf größten Rinderschlachthöfen entnommen. Jeder am Programm teilnehmende Schlachthof entnahm eine Anzahl von Proben, die proportional zur Anzahl der jährlich geschlachteten Tiere der jeweiligen Tierart war. Die Proben werden zur weiteren Analyse an das nationale Referenzlabor für Antibiotikaresistenz ZOBA an der Vetsuisse-Fakultät der Universität Bern geschickt. Gemäß den europäischen Rechtsvorschriften werden Fleischproben von frischem, gekühltem, verpacktem und unbehandeltem Fleisch entnommen, das im Detailhandel verkauft wird. Die Probenahme erfolgt ganzjährig in allen Schweizer Kantonen. Das angewandte Probenahmeschema berücksichtigte die Bevölkerungsdichte jedes Kantons sowie die Marktanteile der Detailhändler. Zudem wurde der Anteil an importiertem und im Inland produziertem Fleisch innerhalb jeder Fleischkategorie in den Probenahmeplan einbezogen.

Das Resistenzüberwachungsprogramm bei erkrankten Tieren wurde 2019 ins Leben gerufen und 2022 konsolidiert, um Kombinationen aus Erregern, Tierarten und Indikationen einzubeziehen, die für die Veterinärmedizin von Bedeutung sind. Die Stämme werden aus diagnostischen Proben von fast allen Schweizer veterinärmedizinischen Diagnoselabors (universitäre, kantonale, private) isoliert, um eine gute Repräsentativität der Ergebnisse zu gewährleisten.

Die Bestimmung der minimalen Hemmkonzentrationen (MHK-Werte) erfolgt am Schweizer nationalen Referenzlabor (ZOBA).